【銳賽小課題】miRNA研究之動物總RNA的提取與電泳

動物總RNA的提取與電泳

I．  實驗目的與要求
A.   理解和掌握提取和純化動物總RNA的技術原理和操作方法。
B.   理解和掌握通過電泳鑒定提取所得的動物總RNA的技術原理和操作方法。
 
II． 實驗原理和背景知識
A.   RNA是生命活動中基因表達過程非常重要的生物大分子，如mRNA,它攜帶了DNA的全部編碼信息。RNA的分離是研究基因功能的重要基礎之一，在分子生物學中占有重要的地位。提取的mRNA可用于Northern blot、RT-PCR、構建 cDNA文庫、Gene Chips以及體外翻譯等實驗。
B.   本次試驗中，由于RNase極穩(wěn)定，所以，在操作RNA時，要格外仔細，以防RNA被降解。在提取RNA之前，必須對所用器皿進行RNase滅活處理。如用180oC干烤8小時以上處理玻璃器皿，或用0.1%的焦碳酸二乙酯(DEPC)的水溶液浸泡玻璃器皿和其它用品。所用水以及相關的緩沖液也需要用0.1% DEPC水處理，但Tris-Cl緩沖液等不可以用DEPC處理。（注意：DEPC有致癌之嫌 ，必須小心操作，防止接觸與吸入 �。�
C.   在動物細胞內，所含RNA主要是 rRNA（占80～85％）、tRNA及小分子RNA（占10～15％）和mRNA（占1～5％）。rRNA含量最豐富，由28S、18S和5S幾類組成。mRNA種類繁多，分子量從數(shù)百至數(shù)千堿基不等，但絕大多數(shù)mRNA在3’端都有一個Poly-A尾巴，因此，可根據(jù)此特性用寡聚脫氧胸苷(Oligo dT)層析柱從總RNA中將 mRNA分離出來。一般情況下，提取的總RNA也可用于Northern blot試驗。
D.   提取動物RNA的實驗操作中要注意的問題有以下幾點：
1.一般用機械研磨或勻漿的方法破碎動物組織細胞；
2.要加入蛋白質變性劑，使核蛋白與RNA分離并釋放出RNA；
3.抑制內源和外源RNase活性；
4.將RNA與DNA、蛋白質及其它細胞成分分開。
E.   總體而言，目前在實驗中應用較多，較為成熟的提取總RNA的方法有3種:
1.    苯酚法：用SDS變性蛋白并抑制RNase活性，經(jīng)多次酚/氯仿抽提除去蛋白、多糖、色素等后，用NaAC和乙醇沉淀RNA；
2.    胍鹽法：用異硫氰酸胍或鹽酸胍和b-巰基乙醇變性蛋白，并抑制RNase的活性，經(jīng)氯仿抽提后再沉淀；
3.    氯化鋰沉淀法：因為鋰在在一定pH下能使RNA相對特異地沉淀，但容易使小分子RNA損失，而且殘留的鋰離子對mRNA有抑制作用。
F.   在本次實驗中，RNA提取過程采用的是Invitrogen公司的TRIzol試劑，其原理是依據(jù)胍鹽法。即在含有強的異硫氰酸胍變性劑的提取液中裂解動物組織粉末，在提取緩沖液中含有RNase抑制劑，抑制RNase活性，保證RNA的完整性。樣品在TRIzol 試劑中能夠充分被裂解，在加入氯仿離心后，溶液會形成上清層、中間層和有機層（下層），RNA分布在上清層中，收集上清層后，經(jīng)異丙醇沉淀便可以回收得到總RNA。
G.    所提取動物總RNA的電泳和檢測：
RNA的檢測主要用瓊脂糖凝膠電泳，分為非變性電泳和變性電泳。一般變性電泳用的最多是甲醛變性電泳（如Northern blot 實驗過程中）。
由于RNA分子是單鏈核酸分子，它不同于DNA的雙鏈分子結構，其自身可以回折形成發(fā)卡式二級結構及更復雜的分子狀態(tài)，以至通過一般傳統(tǒng)的瓊脂塘凝膠電泳難以得到依賴于分子量的電泳分離條帶，為此電泳上樣前將樣品于65攝氏度加熱變性5分鐘，使RNA分子的二級結構充分打開，并且在瓊脂糖凝膠中加入適量的甲醛，可保證RNA分子在電泳過程中持續(xù)保持單鏈狀態(tài)，因此，總RAN樣品便在統(tǒng)一構像下得到了瓊脂糖凝膠上的依賴于分子量的逐級分離條帶。而且RNA變性后有利于在轉印過程中與硝酸纖維素膜的結合。RNA通過甲醛變性瓊脂糖凝膠電泳，可以直觀快捷的分析RNA質量之優(yōu)劣，當有標準的“分子標尺”（marker）存在時，還可相對客觀的對總RNA樣品進行定性和定量。為測定片段大小，可在同一塊膠上加標記物一同電泳，之后將凝膠切下，上色、拍照。

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