由于多重技術(shù)的快速發(fā)展,我們需要分析和解釋的圖像數(shù)據(jù)越來越復(fù)雜。這個系列,我們將回答研究人員或病理醫(yī)生在建立多重免疫熒光/免疫組織化學(xué)(mIF/IHC)或其他多通道圖像分析工作流程起始階段的常見問題(FAQ)。我們提供實現(xiàn)高效和可重復(fù)的mIF/IHC分析的一般指南,主要適用于從3–5μm福爾馬林固定組織切片的多重染色(多達(dá)8個標(biāo)記)獲得的mIF/IHC數(shù)據(jù)。
下面的FAQ概述了與mIF/IHC圖像分析相關(guān)的話題,從分析流程到軟件問題。精心設(shè)計的圖像分析流程將為用戶提供豐富的、基于組織的生物信息。
1. 多重免疫熒光圖像分析的基本步驟是什么?
多重免疫熒光圖像分析通常分為四個關(guān)鍵步驟:
1)組織識別和分割;
2)細(xì)胞分割;
3)細(xì)胞分類和分類器的驗證;
4)測量輸出和數(shù)據(jù)解釋。
有時可能需要額外的步驟,如組織類型分割;在其他情況下,某些步驟(例如基于像素的細(xì)胞分割)可能是不必要的。
2.圖像分析需要多長時間?
將根據(jù)圖像的復(fù)雜性和數(shù)量而有所不同。在很大程度上取決于要分析的切片數(shù)量和大小,包括文件大小和像素數(shù)。一個視野可能需要幾秒鐘來進(jìn)行細(xì)胞檢測和分類,而一張包含30個通道的全切片圖像可能需要數(shù)小時來處理組織識別分割、從基質(zhì)中分割腫瘤及最終分割細(xì)胞。此外,圖像托管的地方可能很重要,通過網(wǎng)絡(luò)或在云上處理圖像有助于緩解數(shù)據(jù)存儲問題,但需要傳輸可能數(shù)TB的圖像數(shù)據(jù)。
3.我們應(yīng)該分析每張組織切片的圖像嗎?
要分析的圖像數(shù)量取決于項目需求。例如,并非所有圖像都需要細(xì)胞密度分析?紤]到所分析的組織的異質(zhì)性,分析往往聚焦于生物標(biāo)記物高表達(dá)的區(qū)域即“熱點”,“熱點”分析已用于對按風(fēng)險大小對患者進(jìn)行分層⑴⑵。然而,當(dāng)需要選擇圖像進(jìn)行分析時,避免依賴于操作人員的采樣偏差至關(guān)重要⑶。更復(fù)雜空間特征的檢測和細(xì)胞間相互作用的測量往往需要對整個切片進(jìn)行分析。
4.哪些圖像分析步驟可以自動化?哪些步驟可以分批進(jìn)行?
大多數(shù)步驟最終都可以自動化,因為前面的手工工作該做的都已經(jīng)做了。為細(xì)胞分類器創(chuàng)建驗證集和測試集允許用戶測試各種變量和閾值,但一次只能創(chuàng)建一種細(xì)胞的。
應(yīng)始終小心對待圖像分析的批處理,因為不同設(shè)置下的不同儀器不會產(chǎn)生完全相同的數(shù)據(jù),即使使用完全相同的標(biāo)本。理想情況下,在充分的培訓(xùn)和參數(shù)調(diào)整的前提下,所有步驟最終都可以一次處理一批,但必須有防護(hù)措施必須到位:防止燈泡熄滅、光學(xué)元件漂移和抗體改變。每批使用單獨(dú)的組織(標(biāo)準(zhǔn)塊)或細(xì)胞對照玻片有助于識別潛在問題 。
5.圖像分析產(chǎn)生能得到什么檢測結(jié)果?
最常見的指標(biāo)是分割組織內(nèi)的細(xì)胞密度(例如,每個癌巢或每平方毫米的CD3+細(xì)胞數(shù))、細(xì)胞百分比(例如,CD3+CD8+細(xì)胞占CD3+的百分比)和最近鄰測量值(例如,從CD3+細(xì)胞到最近癌細(xì)胞的平均微米數(shù))。
多重IF/IHC識別和定位組織內(nèi)復(fù)雜細(xì)胞表型的能力使我們能夠更好地從空間、位置等角度理解和描述組織微環(huán)境中的細(xì)胞生物學(xué)。單個細(xì)胞對象可以根據(jù)用戶定義的細(xì)胞表型分類和單個細(xì)胞在圖像中唯一的X-Y坐標(biāo)位置來表征。然后,可以測量圖像中具有某種特征的所有細(xì)胞的空間特征和細(xì)胞間相互作用。這些測量可能包括熱點、到其他細(xì)胞類型的距離、到組織標(biāo)注(腫瘤邊緣)的距離以及細(xì)胞的微環(huán)境分析⑷⑸⑹。
6.我的實驗室沒有生物信息技術(shù)人員。這會限制或影響我們分析mIF/IHC數(shù)據(jù)的能力嗎?
一點都不影響!許多軟件都是用戶友好的、易于使用,生成的數(shù)據(jù)集可以在簡單的電子表格中處理。盡管從長遠(yuǎn)來看,通過專業(yè)信息技術(shù)人員編寫腳本和處理復(fù)雜的數(shù)據(jù),靈活性和效率都能得到提升,但建立mIF/IHC能力并不需要生物信息學(xué)技術(shù)人員。 Image.sc forum等論壇提供了業(yè)內(nèi)人士提問、交流的地方。
7.什么樣的新員工適合圖像分析這項工作?
尋找那些喜歡使用計算機(jī)和網(wǎng)絡(luò)的人,他們往往有很好的解決問題和排除故障的能力,天性就喜歡在互聯(lián)網(wǎng)搜索、找答案。編寫腳本和直觀地解釋原始數(shù)據(jù)的能力也非常重要。團(tuán)隊合作精神是必不可少的,因為大多數(shù)圖像分析師不是生物學(xué)或統(tǒng)計學(xué)方面的專家,他們往往需要尋求專家支持以填補(bǔ)知識空白。
8. 需要什么軟件來執(zhí)行圖像分析?
多重IF/IHC圖像分析可以使用商業(yè)軟件(如InForm、HALO、Visiopharm)或開源軟件(如QuPath、CellProfiler、ImageJ)。商業(yè)軟件提供免編程、內(nèi)置功能和技術(shù)支持,但成本很高(通常為20000至100000美元)。通常,開源軟件是免費(fèi)的,能夠?qū)崿F(xiàn)有限的圖像分析功能,包括光譜拆解、細(xì)胞分割和圖像拼接。
一般來說,商業(yè)軟件提供更直觀的分析流程,并能提供完善的培訓(xùn)和支持,這可能會使剛接觸圖像分析的用戶受益(或有助于員工更替)。開源軟件提供了更大的靈活性和定制能力,但可能有更陡峭的學(xué)習(xí)曲線來開發(fā)和完善用戶的工作流程。使用開源軟件實現(xiàn)自定義功能可能需要用戶進(jìn)行額外編程,但開源社區(qū)應(yīng)用程序和其擴(kuò)展程序往往已經(jīng)可以滿足特定的分析需求。
9.需要什么硬件支持來進(jìn)行圖像分析?
硬件取決于您經(jīng)常分析的圖像數(shù)量和大小以及您使用的軟件。mIF/IHC分析軟件通?梢栽跇(biāo)準(zhǔn)臺式機(jī)或筆記本電腦上運(yùn)行。16 GB的RAM通常足以進(jìn)行簡單的全切片分析,可能需要32 GB或更多的RAM進(jìn)行復(fù)雜的全切片分析,尤其是在同時運(yùn)行多個線程或程序的情況下。RAM限制可能是某些軟件運(yùn)行過程的瓶頸,因為像素分類器和更復(fù)雜的分析對RAM需求很大。
其他過程,如細(xì)胞檢測,則不那么繁重。多線程計算(如細(xì)胞檢測)受益于多核CPU(以及多個CPU)。如果有足夠的技術(shù)人員,大部分處理可以轉(zhuǎn)移到云計算上。不過,數(shù)千兆字節(jié)的圖像傳輸仍然很花時間。
10.如果將圖像分析交給合作者或?qū)I(yè)第三方服務(wù)商處理,有問題嗎?
理想情況下,同一實驗室執(zhí)行染色和圖像分析,這樣出現(xiàn)問題的話往往很快可以得到解決。然而,外部合作專家和專業(yè)第三方機(jī)構(gòu)也是獲取和分析mIF/IHC數(shù)據(jù)的可行途徑。在與這些合作者接觸時,盡量多花些時間詳細(xì)了解他們的圖像分析工作流程。問他們,對于一個特定的生物標(biāo)記物,細(xì)胞亞群是如何被分類為染色陽性的。他們是不是對你認(rèn)為是真實的東西設(shè)定了閾值?要設(shè)置陽性染色、陰性染色和背景,問他們分析中包括或排除組織的哪些區(qū)域。檢查原始分割結(jié)果,而不僅僅是總結(jié)和選定的局部快照。圖像分析流程中可能會出現(xiàn)很多錯誤,第三方可能不像我們自己那樣積極尋找錯誤,畢竟,我們自己對最終的數(shù)據(jù)和檢測報告負(fù)責(zé)。
11.我應(yīng)該在分析圖像之前預(yù)處理圖像還是從原始圖像開始?
答案取決于生成圖像的方法。某些數(shù)據(jù)采集方法在不同通道之間存在嚴(yán)重串?dāng)_(crosstalk),往往需要線性拆解去除來自其他通道的污染。其他類型的數(shù)據(jù)采集,如質(zhì)譜成像細(xì)胞儀(imaging mass cytometry),可以顯示密切相關(guān)同位素之間的串?dāng)_,不需要對分離良好的通道進(jìn)行處理。建議進(jìn)行一些手動質(zhì)量控制;并非所有樣品都能在染色和封片過程中保持完整和不丟損。將多個圖像拼接到一個文件中常?梢詫崿F(xiàn)更復(fù)雜的空間分析和更好的可視化。
12.我們應(yīng)該警惕圖像中的哪些危險信號?
清楚地了解染色是如何進(jìn)行和圖像如何生成對于高質(zhì)量的圖像分析至關(guān)重要。光譜拆解不好可能導(dǎo)致從一個通道到另一個通道的熒光污染,從而導(dǎo)致誤報信號。熒光強(qiáng)度或背景水平的批次或玻片變化都可能導(dǎo)致需要重新染色、重新成像或需要玻片特定的圖像分析策略。要注意的染色問題包括非特異性染色和非優(yōu)化染色順序,這些染色順序會導(dǎo)致抗原可用性的“傘效應(yīng)”不可用。最后,在流程早期排除質(zhì)量差的組織樣本或質(zhì)區(qū)域?qū)⑹蛊浜蟮膱D像分析更準(zhǔn)確。
13.如何檢查圖像分析的質(zhì)量?
mIF/IHC成像的質(zhì)量控制(QC)對于確保報告準(zhǔn)確至關(guān)重要。成功的多重IF/IHC QC應(yīng)逐一解決組織學(xué)制片、染色、成像以及分析前階段等病理學(xué)和免疫學(xué)等各方面的技術(shù)問題。QC的某些方面可以通過圖像分析軟件進(jìn)行,而其他則需要人工觀察。簡單地說,褶皺、撕裂、組織干燥區(qū)域和大體固定偽影應(yīng)標(biāo)記出來并從分析中排除(手動或使用像素分類器)。飽和度(由于染色或成像)、離焦區(qū)域、一個標(biāo)記物被共定位標(biāo)記物的嚴(yán)重覆蓋、光譜通道之間的相互滲漏和清晰的染色梯度應(yīng)都能通過重新成像或?qū)⑵渑懦魜砀纳。最后,意外的染色模式、?biāo)記物定位和多標(biāo)記物表型(不應(yīng)在同一細(xì)胞中共定位的標(biāo)記物)可能會使單個玻片或整個批次都不合格。
陰性對照在每個感興趣的通道中應(yīng)僅包含自熒光或非特異性信號。陽性對照,(每次運(yùn)行結(jié)果都應(yīng)一直有可重復(fù)性和一致性),應(yīng)與前幾批的相同陽性對照進(jìn)行比較,以驗證在每個通道中觀察到的峰值、平均和最小強(qiáng)度具有可比性。
14.如何處理批次變化?
應(yīng)仔細(xì)、認(rèn)真地建立圖像處理流程,以使其具有高度的重復(fù)性。使用允許無偏量化的工具(例如直方圖和測量圖)。使用內(nèi)部對照(例如扁桃體染色或其他組織特異性對照組織染色)作為指南。
mIF/IHC中常見的技術(shù)導(dǎo)致的差異往往源于組織質(zhì)量差、染色過程不一致和圖像采集不穩(wěn)定。如果在圖像分析之前無法緩解這些問題,則使用z評分進(jìn)行數(shù)據(jù)標(biāo)準(zhǔn)化可能是一個解決方案。否則,您可能需要對每個批次設(shè)定其特定的閾值和細(xì)胞分類器。
15.如何處理患者內(nèi)變異?
組織微環(huán)境通常是異質(zhì)的,因此同時分析多個感興趣區(qū)域(ROI)至關(guān)重要。將組織分割為腫瘤細(xì)胞和基質(zhì)等區(qū)域在空間上解析數(shù)據(jù)特征。隨機(jī)選擇的ROI之間的良好一致性將充分支持使用聚合匯總值(例如,每個患者的平均細(xì)胞密度)。無論組織切片、或整個切片組織或組織微陣列核的大小如何,微環(huán)境結(jié)構(gòu)中的異質(zhì)性不可避免地存在并且是可以容忍的,我們的目標(biāo)是識別具有強(qiáng)大臨床適用性的空間免疫生物標(biāo)記物。
16.我的數(shù)據(jù)結(jié)果非常復(fù)雜,有幾十個標(biāo)記。如何解讀結(jié)果?
降低項目復(fù)雜性的最簡單方法是使用幾十個標(biāo)記進(jìn)行初步試點研究,并選擇研究所需的最簡單、最有效的組合。與免疫學(xué)家或病理學(xué)家討論標(biāo)志物panel的成員,并根據(jù)無偏降維方法(如檢測到的復(fù)雜表型的主成分分析)做出決策。
此外,機(jī)器學(xué)習(xí)分類器和/或無監(jiān)督聚類(t-SNE/UMAP)通常可以識別復(fù)雜的細(xì)胞表型。要有思想準(zhǔn)備有些細(xì)胞不適合預(yù)定的表型!用戶必須仔細(xì)考慮如何處理和驗證這些已識別的細(xì)胞類型。為此,請仔細(xì)檢查細(xì)胞分割和表型的準(zhǔn)確性,并確保它們最適合您的目標(biāo)(例如,容易識別淋巴結(jié)中密集T細(xì)胞的方法可能無法識別腫瘤組織中的大巨噬細(xì)胞)。
17. mIF/IHC中的潛在表型和空間指標(biāo)很多,如何只報告最有用的數(shù)據(jù)?
mIF/IHC研究中表型分析是預(yù)先確定的研究問題的核心,理論假說應(yīng)推動mIF/IHC設(shè)計。這種方法防止由于多次比較、調(diào)整而造成的無法進(jìn)行統(tǒng)計分析的困境。使用與特定患者或組織特征相關(guān)的AI表型分析進(jìn)行二次探索性分析對于發(fā)現(xiàn)新表型非常重要⑺。變量選擇(例如,L1正則化)或縮減(例如,主成分分析)方法可用于將表型或距離子集化,并具有潛在的臨床價值⑻⑼。
18.在發(fā)表論文時需要給出多少圖像分析流程方面的信息?
自動化的完整腳本都應(yīng)包含在補(bǔ)充數(shù)據(jù)中。除特殊情況外,還應(yīng)提供分析的代表性典型圖像。目前有越來越多的軟件方便地支持做這些事情(做總結(jié)報告),這也應(yīng)該是選擇圖像分析軟件時應(yīng)考慮的因素之一。一些商業(yè)軟件這方面相當(dāng)不友好,從而減少任何人復(fù)制或引用您的工作的機(jī)會。
19.我在哪里可以找到更多信息來學(xué)習(xí)圖像分析?
商業(yè)軟件通常包括充分支持和培訓(xùn)來幫助建立業(yè)務(wù)。本行業(yè)相關(guān)專業(yè)軟件網(wǎng)站、在線課程和講座是往往讓您知道某軟件或決定mIF/IHC是否適合您的項目。在線論壇,如 image.sc開源項目是非常好的資源。然而,它們的好處往往需要您花許多時間來學(xué)習(xí)和思考才能得到。關(guān)于多重成像的一些優(yōu)秀文獻(xiàn)綜述也是很好的起點⑽⑾⑿。
20.推薦的在線資源
培訓(xùn)視頻
https://www.youtube.com/playlist?list=PL5ESQNfM5lc7SAMstEu082ivW4BDMvd0U
https://www.youtube.com/c/NEUBIAS/videos?view=0&sort=dd&shelf_id=0
免費(fèi)圖像分析免費(fèi)電子書
https://www.springer.com/gp/book/9783030223854
指南和工具
https://www.nature.com/articles/s41592-021-01156-w
https://www.imagescientist.com/image-analysis#qupath
再現(xiàn)性
https://www.embopress.org/doi/full/10.15252/embj.2020105889
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33785609/
數(shù)據(jù)托管
https://www.nature.com/articles/d41586-020-00594-4
https://immunoatlas.org/pub
目前基于熒光標(biāo)記的多重?zé)晒饨M織免疫mIF/mIHC是探測腫瘤微環(huán)境應(yīng)用最廣泛的技術(shù),TLR專注于mIF/mIHC的相關(guān)技術(shù),致力于將免疫染色(mIF/mIHC)、熒光圖像采集和分析的自動化和智能化,研發(fā)用于mIF/mIHC的全自動免疫組化染色機(jī)(TR-Stainer)和熒光全切片掃描儀,其中TR-sWSI-5F熒光掃描儀是一款輕量入門級產(chǎn)品,具備快速5色掃描功能(藍(lán)色DAPI、綠色FITC、黃色TRITC、紅色Cy5、近紅外Cy7),滿足目前免疫熒光組化的絕大多數(shù)臨床需求。而TR-sWSI-MF(定制化) 的多光譜熒光掃描儀可以將多達(dá)15種顏色和自體熒光彼此得到很好的分離,從而使用戶信心百倍地專注于量化真正發(fā)生的生物學(xué)相互作用,能夠在整個切片上同時觀察和測量組織的細(xì)胞,包括多種細(xì)胞表型。
參考文獻(xiàn)
① F Pagès et al., Lancet, 391, 2128 (2018). PMID: 29754777.
② E Gudlaugsson et al., Histopathology, 61, 1134 (2012). PMID: 22963617.
③S Berry et al., Science, 372, eaba2609 (2021). PMID: 34112666.
④ CM Schürch et al., Cell, 182, 1341 (2020). PMID: 32763154.
⑥A Rasmusson et al., Am J Pathol, 190, 1309 (2020). PMID: 32194048.
⑥C Gong et al., Front Oncol, 8, 649 (2019). PMID: 30666298.
⑦M(jìn)C Lau et al., (2020). Available at: https://bit.ly/3nUnFD4.
⑧S Barua et al., Lung Cancer, 117, 73 (2018). PMID: 29409671.
⑨ JL Carstens et al., Nat Commun, 8, 15095 (2017). PMID: 28447602.
⑩ WCC Tan et al., Cancer Commun (Lond), 40, 135 (2020). PMID: 32301585.
⑪TZ Tien et al., Histopathology, 79, 139 (2021). PMID: 33400265.
⑫ A Viratham Pulsawatdi et al., Mol Oncol, 14, 2384 (2020). PMID: 32671911.