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Blue Pippin全自動(dòng)回收PCR產(chǎn)物助力提高病毒準(zhǔn)種的鑒定準(zhǔn)確性

瀏覽次數(shù):767 發(fā)布日期:2024-5-23  來(lái)源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)
Blue Pippin全自動(dòng)回收PCR產(chǎn)物提高病毒準(zhǔn)種的鑒定準(zhǔn)確性

病毒準(zhǔn)種(Viral quasispecies)是指遺傳物質(zhì)高度相似但不完全相同的異質(zhì)性病毒群體。早期,病毒準(zhǔn)種研究由單個(gè)病毒模板的Sanger測(cè)序完成,但通量低(僅限于幾十種病毒)、成本高,不適合大量病毒的同時(shí)測(cè)序。進(jìn)入二代測(cè)序,該研究依然面臨讀長(zhǎng)短(150-600bp),無(wú)法對(duì)病毒準(zhǔn)種的跨基因連鎖進(jìn)行有效分析。而PacBio和納米孔測(cè)序因?yàn)楣逃械腻e(cuò)誤和PCR過(guò)程中引入的錯(cuò)誤,尤其是PCR過(guò)程的重組嵌合體多被誤認(rèn)是體內(nèi)病毒重組產(chǎn)生,大大降低了病毒準(zhǔn)種的評(píng)估準(zhǔn)確性。

為了解決這類問(wèn)題,研究人員在第一輪cDNA PCR擴(kuò)增的引物加入6-12nt的唯一分子標(biāo)識(shí)符(unique molecular identifiers ,UMIs),標(biāo)記不同來(lái)源的病毒,用以消除后續(xù)分析PCR和測(cè)序產(chǎn)生的錯(cuò)誤。然而單個(gè)UMI(sUMI)不能保證在PCR過(guò)程中始終識(shí)別模板轉(zhuǎn)換(如重組)產(chǎn)物。因此在cDNA另一條鏈上加入第二個(gè)UMI,比較不同UMI組合的頻率及家族之間的UMI序列(dUMI),可識(shí)別出代表PCR期間“重組”分子的Reads。但是dUMI也存在一些問(wèn)題,如去除文庫(kù)中多余引物的純化步驟造成樣本損失,導(dǎo)致dUMI的準(zhǔn)確度可能和sUMI并無(wú)太大差別。因此,迫切需要找到一種有效的測(cè)序方法,提高病毒準(zhǔn)種識(shí)別和鑒定的準(zhǔn)確性。

華盛頓大學(xué)醫(yī)學(xué)與公共衛(wèi)生學(xué)院微生物學(xué)的一個(gè)研究團(tuán)隊(duì)于2023年在《 Virus Evolution 》發(fā)表一篇“Optimized SMRT-UMI protocol produces highly accurate sequence datasets from diverse populations – application to HIV-1 quasispecies”文章聚焦于解決上述問(wèn)題。在該項(xiàng)研究中,基于PacBio滾環(huán)測(cè)序方法,通過(guò)比較sUMI和dUMI方法、全自動(dòng)DNA片段回收和磁珠回收,以及不同PCR循環(huán)數(shù)等因素對(duì)于文庫(kù)制備的影響,開發(fā)了一種適合病毒準(zhǔn)種測(cè)序分析的建庫(kù)方法。

實(shí)驗(yàn)方法:
  • 1.cDNA合成
構(gòu)建含有UMI-1的引物(圖1A),用該引物反轉(zhuǎn)錄樣本中的RNA生成cDNA(圖1B,1 )。
  • 2.巢式PCR第一輪擴(kuò)增
對(duì)于sUMI樣本,用上一步cDNA直接第一輪PCR擴(kuò)增;對(duì)于dUMI樣本,先用一輪PCR引入另一條UMI-2序列,磁珠純化后完成第一輪PCR擴(kuò)增(圖1B,2-5)。
  • 3.樣本回收
利用美國(guó)Sage Science公司的Blue Pippin全自動(dòng)DNA片段回收儀和磁珠法分別回收PCR特定片段長(zhǎng)度的產(chǎn)物(圖1B,6 )。
  • 4.巢式PCR第二輪擴(kuò)增
將回收后的PCR產(chǎn)物再次擴(kuò)增延伸后,磁珠純化去除多余引物(圖1B,7-8 )。
  • 5.制備待測(cè)環(huán)狀DNA分子
將 SMRTbell 條形碼接頭連接到 PCR 產(chǎn)物的末端,以形成環(huán)狀分子以供測(cè)序(圖1B,9 )。
  • 6.測(cè)序分析
PacBio SMRT測(cè)序并完成生信分析(圖1C),識(shí)別具有同樣UMI的環(huán)狀共有序列 (CCS),最終得到病毒準(zhǔn)種的結(jié)果(圖1D)。

圖1 實(shí)驗(yàn)整體流程 其中Blue Pippin用于純化第一次PCR產(chǎn)物

實(shí)驗(yàn)結(jié)果
  • 不同PCR產(chǎn)物純化的方法對(duì)于實(shí)驗(yàn)效果的影響
在巢式PCR第一輪擴(kuò)增后,分別比較Sage Science公司Blue Pippin和磁珠法純化擴(kuò)增產(chǎn)物以及未純化產(chǎn)物,發(fā)現(xiàn)Blue Pippin 純化更有效地去除較小片段的 PCR 雜帶,而且產(chǎn)物得率遠(yuǎn)高于磁珠法。(圖2)

圖2 根據(jù)純化方法和PCR循環(huán)數(shù)對(duì)產(chǎn)物進(jìn)行凝膠電泳和分析。Blue Pippin純化的條帶更粗,且沒有雜帶,說(shuō)明回收得率更高,純化效果更好

不僅如此,在巢式PCR第二輪擴(kuò)增中,比較不同純化方法、PCR循環(huán)次數(shù)對(duì)PCR產(chǎn)生重組DNA比例的影響,發(fā)現(xiàn)Blue Pippin純化的樣本中,重組DNA雜帶的比例明顯少于磁珠法純化樣本以及未純化樣本。說(shuō)明Blue Pippin純化效果優(yōu)于磁珠法(圖3)。此外,同樣利用Blue Pippin純化樣本,如果PCR循環(huán)數(shù)越少,純化樣本中重組DNA雜帶的比例也越低。因此,同樣樣本體系,通過(guò)Blue Pippin可減少PCR循環(huán)數(shù)并提升文庫(kù)質(zhì)量。

圖3 每個(gè)sUMI家族的重組讀長(zhǎng)比例,按PCR中的平均模板輸入分組,其中每個(gè)點(diǎn)代表一個(gè)單獨(dú)的sUMI家族,按純化方法和總PCR循環(huán)數(shù)著色。
(Blue Pippin純化樣本的測(cè)序?qū)嶒?yàn)結(jié)果說(shuō)明,相對(duì)于磁珠和未純化樣本,Blue Pippin純化能夠有效減少PCR中重組雜帶的產(chǎn)生)
 
  • UMI標(biāo)記方法的優(yōu)化改進(jìn)
通過(guò)比較sUMI和dUMI測(cè)序結(jié)果,作者設(shè)定了一個(gè)sUMI的檢測(cè)閾值線——同一個(gè) sUMI 族中,如果任何位置的最小一致性小于70%,則判定該序列存在重組或者其他錯(cuò)誤(稱為 0.7 判定原則)。利用這一判定原則,作者篩選了sUMI測(cè)序結(jié)果并與dUMI的測(cè)序結(jié)果進(jìn)行比較。結(jié)果發(fā)現(xiàn)絕大部分判定為正確序列的dUMI都能通過(guò)0.7 sUMI判定原則。說(shuō)明這一標(biāo)準(zhǔn)不但有足夠的準(zhǔn)確性,而且避免了dUMI中由于需要額外的純化步驟造成的樣本損失等弊端。

原文鏈接:https://doi.org/10.1101/2023.02.23.529831

總結(jié)

使用Blue Pippin純化PCR產(chǎn)物,使用0.7sUMI判定標(biāo)準(zhǔn),可以有效提高病毒準(zhǔn)種測(cè)序結(jié)果準(zhǔn)確性,并避免dUMI帶來(lái)的得率減少等其他弊端。是一種可行的檢測(cè)方法。

環(huán)亞生物科技有限公司作為美國(guó)Sage Science公司DNA片段回收系列產(chǎn)品在中國(guó)區(qū)的獨(dú)家代理商,自2011年以來(lái)將Sage Science的產(chǎn)品線引入國(guó)內(nèi),一直為國(guó)內(nèi)用戶提供專業(yè)的全自動(dòng)核酸片段回收系統(tǒng)的安裝測(cè)試、應(yīng)用培訓(xùn),技術(shù)支持與售后維護(hù)工作,贏得客戶的一致好評(píng)與信任。環(huán)亞生物科技有限公司將一如既往地支持越來(lái)越多的Sage Science用戶。

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